Ла Молина — Автотроф
Эта обычайная резиденция расположена на бывшем ранчо, которое было преобразовано в открытый заповедник с ограниченной жилой застройкой. На участке есть холмистая местность и ветряная мельница с потрясающим видом на горы Ортис и Сандия на юго-западе. Дизайн развивался вокруг 2 клиентских запросов: отмечать просмотры и дом должен расти из сайта. Поэтому мы спроектировали дом, используя утрамбованную землю, цветной бетон и ржавый гофрированный металл, которые соответствуют тону местной почвы. Солнцезащитные шторы из перфорированной стали обеспечивают защиту от солнца для больших оконных проемов, из которых открывается вид на пейзаж.
Посмотреть в полном размере Посмотреть в полном размере Посмотреть в полном размере Главный дом разделен на 2 крыла: общественное крыло, в котором есть кухня, столовая, гостиная и вспомогательные помещения; и отдельное крыло с гостиной, главной спальней и ванной комнатой.
Крылья соединены открытой гостиной / крыльцом, которое служит входом в дом и открывает вид на пейзаж и ветряную мельницу. Для гостей в отеле есть 2 домика; ржавые коробки из гофрированного металла, соединенные общим крыльцом. Клиент также увлекается лошадьми и нуждался в доме для своих 7 лошадей. Здесь есть конюшня, конный манеж и прогулочный загон, который позволяет лошадям исследовать холмистую местность.
В то время как внешний вид дома выполнен из прочных материалов, предназначенных для создания ощущения защиты от резкого ветра и солнца, интерьер предназначен для создания ощущения убежища. Деревянная структура и детали в сочетании с утрамбованной землей и глиняной штукатуркой создают ощущение тепла и гостеприимства. Шкафы, межкомнатные двери и некоторые детали сделаны из голубой сосны, древесины, полученной из местных деревьев пинон, погибших от нашествия короедов.
Материалы дома создают постоянно меняющиеся световые качества в зависимости от времени года и времени суток. Внутренние пространства соединены с ландшафтом за счет выбора расположения окон. Виды в общественном крыле обрамлены далекими горами в столовой, гостиной и крыльце. В то время как в Master Suite связь с ландшафтом более непосредственная. В спальне и ванной комнате есть угловые окна/двери, из которых открывается вид на конюшню и блуждающий загон.
Каситас
Конюшни
Посмотреть в полном размере Посмотреть в полном размере Посмотреть в полном размереК пониманию химической экологии альтернативной тактики размножения луковичного клеща (Rhizoglyphus robini)
1.
Kodric-Brown A, Brown JH. Правда в рекламе: виды признаков, которым способствует половой отбор. Я Нат. 1984;124(3):309–323. [Google Scholar]
2. Оливейра Р.Ф., Таборский М., Брокманн Х.Дж. Альтернативная репродуктивная тактика: интегративный подход. Кембридж: Издательство Кембриджского университета; 2008. [Google Scholar]
3. Брокманн Х.Дж., Графен А., Докинз Р. Эволюционно стабильная стратегия гнездования осы-землекопа. Дж Теор Биол. 1979;77(4):473–496. [PubMed] [Google Scholar]
4. Общий МР. Нерестовое поведение лосося и эволюция жизненного цикла в изменяющихся условиях. Экология. 1991;72(4):1180–1186. [Google Scholar]
5. Басс А. Диморфный мозг самца и альтернативная репродуктивная тактика у вокализирующей рыбы. Тренды Нейроси. 1992;15(4):139–145. [PubMed] [Google Scholar]
6. Sinervo B, Lively CM. Игра «камень-ножницы-бумага» и эволюция альтернативных мужских стратегий. Природа. 1996;380(6571):240–243. [Академия Google]
7. Эмлен Д.Дж.
8. Stewart KA, Hudson CM, Lougheed SC. Могут ли альтернативные тактики спаривания способствовать интрогрессии через гибридную зону, обходя выбор самки? Дж. Эвол Биол. 2017;30(2):412–421. [PubMed] [Google Scholar]
9. Gadgil M. Мужской диморфизм как следствие полового отбора. Я Нат. 1972;106(951):574–580. [Google Scholar]
10. Эмлен Д.Дж. Экологический контроль диморфизма длины рогов жука Onthophagus acuminatus (Coleoptera: Scarabaeidae) Proc Biol Sci. 1994;256(1346):131–136. [Google Scholar]
11. Томкинс Дж.Л. Экологические и генетические детерминанты диморфизма длины щипцов самцов европейской уховертки Forficula auricularia L. Behav Ecol Sociobiol. 1999;47(1–2):1–8. [Google Scholar]
12. Кремер С., Хайнце Дж. Стресс отращивает крылья: экологическая индукция расселения крылатых самцов у муравьев Cardiocondyla.
13. Moczek AP, Hunt J, Emlen DJ, Simmons LW. Пороговая эволюция в экзотических популяциях полифенического жука. Эвол Экол рез. 2002;4(4):587–601. [Google Scholar]
14. Piché J, Hutchings JA, Blanchard W. Генетическая изменчивость норм пороговой реакции для альтернативных репродуктивных тактик у самцов атлантического лосося, Salmo salar. Proc Biol Sci. 2008; 275 (1642): 1571–1575. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
15. Неттл Д., Бейтсон М. Адаптивная пластичность развития: что это такое, как мы можем ее распознать и когда она может развиться? Proc Biol Sci. 1812;2015(282):20151005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
16. Эмлен Д.Дж. Искусственный отбор по аллометрии длины рогов и размера тела у рогатого жука Onthophagus acuminatus (Coleoptera: Scarabaeidae) Эволюция. 1996;50(3):1219–1230. [PubMed] [Google Scholar]
17. Smallegange IM. Комплексное воздействие окружающей среды на проявление альтернативных репродуктивных фенотипов у луковичного клеща.
Эвол Экол. 2011;25(4):857–873. [Google Scholar]
18. Rhebergen FT, Stewart KA, Smallegange IM. Зависимая от питательных веществ аллометрическая пластичность у самца дифенического клеща [Интернет]. 2021. 10.1101/2021.06.14.448383.
19. Smallegange IM, Rhebergen FT, Stewart KA. Соображения на перекрестном уровне для объяснения давления отбора и поддержания генетической изменчивости в зависимых от состояния мужских морфах. Curr Opin Insect Sci. 2019;36:66–73. [PubMed] [Google Scholar]
20. Godin J-GJ. Риск хищничества и альтернативная тактика спаривания самцов тринидадских гуппи (Poecilia reticulata) Oecologia. 1995;103(2):224–229. [PubMed] [Google Scholar]
21. Шустер С.М. Репродуктивное поведение ɑ-, β-, Ɣ- самцов морф Paracerceis sculpta , морское изоподное ракообразное. Поведение. 1992; 121:3–4. [Google Scholar]
22. Юкема Дж., Пьерсма Т. Постоянные подражания самкам токующей кулика. Биол Летт. 2006;2(2):161–164. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
23.
Shine R, Phillips B, Waye H, LeMaster M, Mason RT. Преимущества женской мимикрии у змей. Природа. 2001; 414 (6861): 267. [PubMed] [Google Scholar]
24. Шустер С.М., Уэйд М.Дж. Одинаковый успех спаривания среди репродуктивных стратегий самцов морских изопод. Природа. 1991;350(6319):608–610. [Google Scholar]
25. Norman MD, Finn J, Tregenza T. Имитация самок как альтернативная репродуктивная стратегия у гигантских каракатиц. Proc Biol Sci. 1999;266(1426):1347–1349. [Google Scholar]
26. Карлсон П., Бутенандт А. Феромоны (эктогормоны) у насекомых. Анну Рев Энтомол. 1959; 4 (1): 39–58. [Google Scholar]
27. Закон JH, Regnier FE. Феромоны. Анну Рев Биохим. 1971; 40 (1): 533–548. [PubMed] [Google Scholar]
28. Гомес-Диас С., Бентон Р. Радость половых феромонов. EMBO Rep. 2013;14(10):874–883. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
29. De Pasqual C, Groot AT, Mappes J, Burdfield-Steel E. Эволюционное значение внутривидовой изменчивости половых феромонов.
Тенденции Экол Эвол. 2021;36(9):848–859. [PubMed] [Google Scholar]
30. Ono T. Влияние температуры выращивания на соотношение компонентов феромонов у клубневой моли картофеля Phthorimaea operculella, (Lepidoptera: Gelechiidae. J Chem Ecol. 1993;19(1):71–81. [PubMed] [Google Scholar]
31 Hock V, Chouinard G, Lucas E, Cormier D, Leskey T, Wright S и др. Установление абиотических и биотических факторов, необходимых для надежного производства мужских феромонов и привлечения феромонов самками сливы curculios Conotrachelus nenuphar (Coleoptera: Curculionidae. Can Entomol. 2014;146(5):528–547. [Google Scholar]
32. Boppré M, Schneider D. Пирролизидиновые алкалоиды количественно регулируют как морфогенез органов обоняния, так и биосинтез феромонов у самцов мотыльков Creatonotos (Lepidoptera: Arctiidae. J Comp Physiol A. 1985;157(5):569–577. [Google Scholar]
3 3. Martín J, López P. Добавки с витамином D повышают привлекательность запаха самцов для самок иберийских скальных ящериц Proc Biol Sci.
2006;273(1601):2619–2624. [бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
34. Edde PA, Phillips TW, Robertson JB, Dillwith JW. Выработка феромонов Rhyzopertha dominica (Coleoptera: Bostrichidae) в зависимости от растения-хозяина и размера жука. Ann Entomol Soc Am. 2007;100(1):83–9.0. [Google Scholar]
35. Ming Q-L, Lewis SM. На выработку феромонов самцами Tribolium castaneum (Coleoptera: Tenebrionidae) влияет качество рациона. Дж Экон Энтомол. 2010;103(5):1915–1919. [PubMed] [Google Scholar]
36. Уэддл К.Б., Митчелл С., Бэй С.К., Сакалук С.К., Хант Дж. Половые взаимодействия генотипа и окружающей среды для экспрессии кутикулярных углеводородов у украшенных сверчков, Gryllodes sigillatus: значение для эволюции надежности сигнала. Дж. Эвол Биол. 2012;25(10):2112–2125. [PubMed] [Академия Google]
37. Liedo P, Orozco D, Cruz-López L, Quintero JL, Becerra-Pérez C, del Refugio HM, et al. Влияние посттеральной диеты на продуктивность стерильных дрозофил Anastrepha ludens и Anastrepha obliqua .
J Appl Entomol. 2013; 137:49–60. [Google Scholar]
38. Blaul B, Steinbauer R, Merkl P, Merkl R, Tschochner H, Ruther J. Олеиновая кислота является предшественником линолевой кислоты и мужского полового феромона в Nasonia vitripennis . Насекомое Биохим Мол Биол. 2014;51:33–40. [PubMed] [Академия Google]
39. Дженсен К., Ширман М., Рапкин Дж., Кэри М.Р., Хаус С.М., Хант Дж. Изменение экспрессии половых феромонов в результате изменения питания у самцов тараканов. Поведение Экол. 2017;28(6):1393–1401. [Google Scholar]
40. Радван Дж. Определение мужской морфы у двух видов акаридных клещей. Наследственность (Эдинб) 1995;74(6):669–673. [Google Scholar]
41. Дир Дж. А., Смоллеганж И. М. Определяет ли зависимость от частоты выживание самцов морфа луковичного клеща Rhizoglyphus robini? Exp Appl Acarol. 2014;62(4):425–436. [PubMed] [Академия Google]
42. Вентилятор QH, Чжан ZQ. Ревизия Rhizoglyphus Claparède. Acari: Acaridae Австралазии и Океании.
Syst Appl Acarol Soc. 2004.
43. Beuken TP, Duinmeijer CC, Smallegange IM. Стоимость оружия: невооруженные самцы производят больше потомства, чем вооруженные самцы самцов-диморфных клещей. Дж. Эвол Биол. 2019;32(2):153–162. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
44. Croll JC, Egas M, Smallegange IM. Экоэволюционная петля обратной связи между динамикой популяции и экспрессией бойцов влияет на эволюцию альтернативных репродуктивных тактик. Дж Аним Экол. 2019;88(1):11–23. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
45. Radwan J, Czyz M, Konior M, Kolodziejczyk M. Агрессивность двух самцов луковичных клещей Rhizoglyphus robini. Этология. 2000;106(1):53–62. [Google Scholar]
46. Stewart KA, Van den Beuken TPG, Rhebergen FT, Deere JA, Smallegange IM. Доказательства существования третьего мужского типа у мужского диморфного модельного вида. Экология. 2018;99(7):1685–1687. [PubMed] [Google Scholar]
47. Smallegange IM, Coulson T. Стохастическая демография двух сосуществующих мужских морфов.
Экология. 2011;92(3):755–764. [PubMed] [Google Scholar]
48. Smallegange IM, Thorne N, Charalambous M. Компромиссы пригодности и поддержание альтернативных мужских морфов луковичного клеща (Rhizoglyphus robini): компромиссы фитнеса в альтернативных мужских морфах. Дж. Эвол Биол. 2012;25(5):972–980. [PubMed] [Google Scholar]
49. Radwan J. Наследуемость мужской морфы луковичного клеща, Rhizoglyphus robini (Astigmata, Acaridae) Exp Appl Acarol. 2003;29(1–2):109–114. [PubMed] [Google Scholar]
50. Stewart KA, Draaijer R, Kolasa MR, Smallegange IM. Роль генетического разнообразия в эволюции и поддержании альтернативных мужских репродуктивных тактик, ориентированных на окружающую среду. БМС Эвол Биол. 2019;19(1):58. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
51. Plesnar-Bielak A, Jawor A, Kramarz PE. Комплексная реакция связанных с размером признаков луковичных клещей (Rhizoglyphus robini) в повышенных температурных условиях — экспериментальный эволюционный подход.
J Эксперт Биол. 2013; 216 (часть 24): 4542–4548. [PubMed] [Google Scholar]
52. Радван Дж., Климас М. Диморфизм самцов луковичного клеща, Rhizoglyphus robini: бойцы выживают лучше. Этол Экол Эвол. 2001;13(1):69–79. [Академия Google]
53. Beuken TP, Smallegange IM. История питания самцов влияет на плодовитость самок самцов-диморфных клещей: свидетельство брачного дара? Эвол Экол. 2018;32(4):411–425. [Google Scholar]
54. Герсон У., Коэн Э., Капуя С. Луковичный клещ, Rhizoglyphus robini (Astigmata: Acaridae) в качестве экспериментального животного. Exp Appl Acarol. 1991; 12(1–2):103–110. [Google Scholar]
55. Leal WS, Kuwahara Y, Nakano Y, Nakao H, Suzuki T. Новый монотерпен акаридного клеща Tyrophagm perniciosm Acarina, Acaridae. Сельскохозяйственная биохимия. 1989;2(Е).
56. Mizoguchi A, Mori N, Nishida R, Kuwahara Y. α-Acaridial женский половой феромон из тревожного феромона, испускающего клеща Rhizoglyphus robini. Дж. Хим. Экол. 2003;29(7):1681–1690.
[PubMed] [Google Scholar]
57. Henneken J, Goodger JQD, Jones TM, Elgar MA. Опосредованные диетой феромоны и характерные смеси могут повысить надежность сигнала. Front Ecol Evol [Интернет]. 2017 г.: 10.3389/fevo.2016.00145. [CrossRef] [Google Scholar]
58. Брюкнер А., Хетхофф М. Онтогенез химии сальных желез панцирного клеща Archegozetes longisetosus Aoki (Oribatida, Trhypochthoniidae) Int J Acarology. 2017;43(5):337–342. [Google Scholar]
59. Пуресваран Д.С., Борден Дж.Х. Больше лучше? Размер и продукция феромонов у горного соснового жука Dendroctonus ponderosae Hopkins (Coleoptera: Scolytidae) J Insect Behav. 2003;16(6):765–782. [Google Scholar]
60. Байерс Дж.А. Стоимость продукции феромона тревоги у хлопковой тли. Aphis gossypii Sci Nat. 2005;92(2):69–72. [PubMed] [Академия Google]
61. Ruther J, Matschke M, Garbe L-A, Steiner S. Количество имеет значение: мужской половой феромон сигнализирует о качестве партнера у паразитической осы Nasonia vitripennis .
Proc Biol Sci. 2009;276(1671):3303–3310. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
62. Харари А.Р., Захави Т., Тьери Д. Стоимость производства феромонов у сигнальных самок бабочек: стоимость производства феромонов у бабочек. Эволюция. 2011;65(6):1572–1582. [PubMed] [Google Scholar]
63. Биргерссон Г., Шлитер Ф., Бергстрем Г., Лёфквист Дж. Индивидуальные вариации содержания агрегационных феромонов у короеда, Ips typographus. Дж. Хим. Экол. 1988;14(9):1737–1761. [PubMed] [Google Scholar]
64. Панкевитц Ф., Хилкер М. Поликетиды у насекомых: экологическая роль этих широко распространенных химических веществ и эволюционные аспекты их биогенеза. Biol Rev Camb Philos Soc. 2008;83(2):209–226. [PubMed] [Google Scholar]
65. Kuwahara Y, Shibata C, Akimoto K, Kuwahara M, Suzuki T. Исследование феромонов на акаридных клещах. XIII. Идентификация формиата нерила как феромона тревоги луковичного клеща Rhizoglyphus robini Acarina: Acaridae. Аппл Энтомол Зоол. 1988;23(1):76–80.
[Google Scholar]
66. Howard RW, Kuwahara Y, Suzuki H, Suzuki T. Исследование феромонов на акаридных клещах. XII. Характеристика углеводородов и морфология наружных желез опишонотальных желез шести видов клещей Acari: Astigmata. Аппл Энтомол Зоол. 1988;23(1):58–66. [Google Scholar]
67. Leal WS, Kuwahara Y, Suzuki T. Robinal, высококонъюгированный монотерпеноид клеща Rhizoglyphus robini. Химическая экология астигматидных клещей, XXVII (1) Naturwiss. 1990;77(8):387–388. [Google Scholar]
68. Кувахара Ю. Химическая экология астигматидных клещей. В: Cardé RT, Millar JG, редакторы. Достижения в области химической экологии насекомых. Кембридж: Издательство Кембриджского университета; 2004. стр. 76–109. [Google Scholar]
69. Heethoff M, Raspotnig G. Расширение «пространства, свободного от врагов» для панцирных клещей: свидетельство химической защиты молоди Archegozetes longisetosus от стафилин Stenus juno . Exp Appl Acarol. 2012;56(2):93–97.
[PubMed] [Google Scholar]
70. Barata EN, Serrano RM, Miranda A, Nogueira R, Hubbard PC, Canário AVM. Предполагаемые феромоны из анальных желез самцов морских собачек привлекают самок и повышают репродуктивный успех самцов. Аним Бехав. 2008;75(2):379–389. [Google Scholar]
71. Mazzoldi C, Rasotto MB. Альтернативная тактика спаривания самцов Gobius niger . Дж. Фиш Биол. 2002;61(1):157–172. [Google Scholar]
72. Locatello L, Mazzoldi C, Rasotto MB. Эякулят самцов кроссовок феромонально незаметен у черного бычка, Gobius niger (Teleostei, Gobiidae) J Exp Zool. 2002;293(6):601–605. [PubMed] [Google Scholar]
73. Shumate AM, Teale SA, Ayres BD, Ayres MP. Подрывной отбор поддерживает различные смеси феромонов у короеда Ips pini. Окружающая среда Энтомол. 2011;40(6):1530–1540. [PubMed] [Google Scholar]
74. Collins RD, Cardé RT. Изменчивость и наследуемость аспектов продукции феромонов у розовой листовертки Pectinophora gossypiella (Lepidoptera: Gelechiidae) Ann Entomol Soc Am.
1985;78(2):229–234. [Google Scholar]
75. Zhu J, Chastain BB, Spohn BG, Haynes KF. Ассортативное скрещивание у двух феромонных штаммов капустной бабочки. Trichoplusia ni J Поведение насекомых. 1997;10(6):805–817. [Google Scholar]
76. Брукс Р., Хант Дж., Блоуз М.В., Смит М.Дж., Бюссьер Л.Ф., Дженнионс М.Д. Экспериментальные доказательства многофакторного стабилизирующего полового отбора. Эволюция. 2005;59(4):871–880. [PubMed] [Google Scholar]
77. Смаджа С., Бутлин Р.К. По запаху видообразования: хемосенсорная система и ее роль в изоляции до спаривания. Наследственность (Эдинб) 2009;102(1):77–97. [PubMed] [Google Scholar]
78. Groot AT, Schöfl G, Inglis O, Donnerhacke S, Classen A, Schmalz A, et al. Внутрипопуляционная изменчивость смеси половых феромонов моли: генетическая основа и поведенческие последствия. Proc Biol Sci. 2014;281(1779):20133054. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
79. Groot AT, van Wijk M, Villacis-Perez E, Kuperus P, Schöfl G, van Veldhuizen D, et al.