Морилка для чего: Для чего нужна морилка для дерева и как ею пользоваться

Posted on By alexxlab Разное

Содержание

Для чего нужна морилка? | ООО «ВЕРШИНА»

Среди современных строительных материалов морилка занимает особое место. Благодаря этому средству можно придать древесине какой угодно цвет и оттенок, а также защитить её от внешних воздействий. Первое упоминание об этом составе относится к 19-му веку. В те далёкие времена морилка называлась «кёльнская земля».

Дело в том, что грунт, использовавшийся для производства первых морилок, был найден в окрестностях Кёльна. Эти первые морилки могли окрасить дерево только в ярко коричневый цвет. В наши дни этот натуральный краситель производится из углеродов, которые содержатся в угле и нефти.

Что такое морилка для дерева?

По большому счёту, морилка — это краситель на основе натуральных компонентов, используемый для окрашивания и защиты деревянных поверхностей способом пропитки. Морилка, в отличие от обычной краски, не образует лаковой плёнки и достаточно глубоко проникает в текстуру дерева.

Существует множество разновидностей морилок, которые выпускают как в жидком виде, так и в порошкообразном.

 Жидкие морилки производятся на основе воды, воска или спирта.

Кроме этих основных, существует и много других типов морилок:

  • Морилки на основе масла
  • Акриловые морилки
  • Нитроморилки
  • Гелевые морилки

Самыми популярными, безусловно, являются морилки на основе воды. После их нанесения древесина может светлеть или темнеть, в зависимости от состава красителя. Морилки на водной основе хороши тем, что безопасны для здоровья человека, разнообразны в плане цвета, довольно дёшевы и при этом хранятся длительное время.

Впрочем, есть у них и недостатки. Обработанная водной морилкой древесина долго сохнет и может лишиться влагостойкости. Если на обрабатываемой поверхности водянистой морилки слишком много, то это может привести к появлению трещин.

Что касается морилок на спиртовой основе, то они хорошо проникают в поверхность древесины, но резко пахнут и могут образовывать пятна.

Поэтому, для обработки ими древесины лучше всего использовать краскопульт.

Масляные морилки ложатся на обрабатываемую поверхность ровным слоем и не теряют цвет с течением лет.

Нитроморилки показывают высокую устойчивость к действию ультрафиолета. Восковые морилки покрывают древесину тонкой водонепроницаемой плёнкой. Акриловые морилки хорошо защищают древесину от внешних воздействий и отлично выявляют её рисунок. И, наконец, гелевые морилки идеально подходят для обработки мягких пород древесины.

Как наносить морилку?

При нанесении морилки на поверхность деревянного изделия необходимо придерживаться ряда правил. Если поверхность находится в вертикальном положении, то её следует обрабатывать аккуратными мазками снизу вверх. Поступая так, вы не разбрызгаете морилку на смежные поверхности и не допустите появления на окрашиваемой поверхности пятен.

Если обрабатываемая поверхность расположена по горизонтали, то необходимо сначала красить вдоль древесных локон, потом поперёк волокон, а на завершающем этапе повторить продольное окрашивание.

Для работы с морилками необходимо иметь кисть, краскопульт и тампон из поролона. Если вы решили воспользоваться кистью, то для начала проверьте её на уровень качества. Хорошая кисть при соприкосновении с кожей не оставляет на ней ворсинок. Ширина кисти, которой будете наносить морилку, должна составлять 100 мм.

Морилки нашего завода

На заводе бытовой химии «Вершина» вы можете купить оптом следующие виды морилок:

для чего нужна? Выбираем цветовую гамму.

Для обработки древесины могут использоваться различные лакокрасочные материалы, но большинство из них служит для создания верхнего декоративно-защитного покрытия, которое к тому же закрывает рисунок. В том случае, если используется морилка для дерева, то результат получается совершенно другим.

Содержание этой статьи

  • Для чего нужна морилка для дерева?
      • Работа с водной морилкой. Видео:
  • Виды морилок
  • Морилки на водной основе
  • Морилки на спиртовой основе
      • Как сделать морилку для дерева своими руками? Видео:
  • Масляные морилки
  • Акриловые и восковые морилки
    • Как изготовить морилку для дерева своими руками?

Этот материал, который в профессиональной среде называется «бейцом», позволяет придать желаемый цвет или оттенок, при этом не скрывая красоту древесины, а, наоборот, более четко проявляя ее рисунок и раскрывая всю красоту. Умелое использование морилки может облагородить любой предмет мебели или иное изделие из дерева.

Для чего нужна морилка для дерева?

Использование морилки при обработке деревянных изделий преследует одновременно несколько целей, в отличие от лакокрасочных материалов, используемых для декорирования. Морилка, по сути, является потравочным составом, с помощью которого не только меняется внешний вид дерева, но и служит для придания ему особых свойств и защиты от самых агрессивных врагов: влаги, микроорганизмов и других.

Можно выделить несколько целей, для достижения которых используется морилка:

  • придание древесине определенного тона или цвета иногда даже с целью имитации более дорогих пород;

  • защита от гниения в результате попадания влаги или разрушительной работы древоточцев, то есть применяется в качестве обычного антисептика;

  • восстановление и реставрация старых поверхностей из дерева, и наиболее часто в таких случаях используется принцип отбеливания, который можно считать способом подготовить основу под дальнейшую обработку, в том числе и нанесение тонирующих растворов;

  • придание структуре дерева большей выразительности при одновременном упрочнении материала;

  • улучшение влагостойкости материала, а в некоторых случаях даже приобретение водоотталкивающего эффекта;

  • увеличение срока службы;

  • декорирование древесины, в том числе и с использованием принципа комбинирования цветов, нанесения оттенков, не характерных для натурального материала и т. д.

Но при выборе морилки для работ обязательно следует учитывать, что не все растворы в равной мере обладают вышеуказанными функциями: часто случается превалирование одних над другими.

Поэтому необходимо учитывать эту особенность и приобретать раствор для обработки древесины с наиболее подходящими характеристиками.

Работа с водной морилкой. Видео:

Виды морилок

Морилка представляет собой раствор специального пигмента, обладающий окрашивающими, защитными, антисептическими и другими свойствами, при этом классификация проводится по типу основы. Таким образом, все бейцы можно разделить на:

  • водные;
  • спиртовые,
  • масляные;
  • акриловые;
  • восковые.

Отдельным видом являются и рустикальные морилки, основа которых может быть любой. Главным их признаком, по которому они выводятся в отдельную группу, является получение такого способа обработки древесины, при котором удается получить игру нескольких цветов на обрабатываемом участке.

Обязательно перед тем как красить морилкой дерево следует провести цветопробу выбранного состава, так как заявленный производителем оттенок на древесине разных видов может проявиться во всем многообразии.

Обычно для испытаний используют доску того же вида, что и обрабатываемая поверхность, но не всегда такой вариант возможен, и поэтому для этого следует выбирать тыльные поверхности изделий.

Морилки на водной основе

Этот вид бейцев самый распространенный и популярный, представлен широкой цветовой гаммой оттенков, но исключительно натуральных цветов, присущих древесине.

Поэтому морилка для дерева на водной основе используется только в качестве средства для придания определенного оттенка, который при этом может не совпадать с исходным.

Но чаще всего они применяются для предварительной и защитной обработки дерева и получения более яркого рисунка структуры.

Среди преимуществ этого вида следует обозначить:

  • экологичность и безопасность;
  • большой выбор тонирующих оттенков;
  • способность глубоко проникать в структуру древесины;
  • легкость смены или корректировки оттенка во время работы и при необходимости, так как предыдущий слой можно смыть и нанести новый.

Из относительных недостатков следует считать длительный период сушки изделий, обработанных составом. А, кроме того, придется подумать о том что делать с досками после покрытия морилкой, так как в этом случае появляется насущная необходимость нанесения дополнительного слоя защитного покрытия, чаще всего бесцветного лака.

Но, выбирая этот вид для обработки изделий из древесины, следует учитывать и то, что глубокое проникновение раствора может иметь и негативные последствия, среди которых:

  • ухудшение влагостойкости;
  • подъем волокон, что требует проведения дополнительной работы по шлифованию поверхности;
  • деформация изделий из дерева от влаги, например, их скручивание, растрескивание и т. д.

В зависимости от требуемого результата морилки на водной основе могут наноситься в один или несколько слоев, а приобрести их можно как в готовом для применения виде, так и в форме порошка.

Морилки на спиртовой основе

Важным преимуществом этого вида морилок является то, что они быстро сохнут, но при этом работа с ними требует определенных навыков, так как добиться равномерного окрашивания поверхности непросто. Одним из неприятных недостатков являются характерные масляные пятна, выделяющиеся на общем фоне блеском или нюансом оттенка. Лучшего эффекта можно добиться при нанесении состава с помощью краскопульта.

Кроме скорости высыхания положительным моментом можно считать создание эффективной защиты дерева от ультрафиолетового излучения и повышение влагостойкости, поэтому рекомендованы для отделки поверхностей, эксплуатируемых на улице, тем более что при работе в помещении необходимо обеспечить хорошее проветривание из-за специфического и достаточно токсичного запаха.

Но, несмотря на некоторые сложности использования, широкая цветовая гамма таких морилок обеспечивает им популярность, тем более что с течением времени сохраняется практически первоначальная яркость красок.

Основой таких морилок служат технический спирт и анилиновые красители, а для работ можно приобрести как готовые составы или концентраты, так и сухие порошки, которые следует развести, строго следуя инструкции.

Как сделать морилку для дерева своими руками? Видео:

Масляные морилки

Если нужна морилка для дерева для наружных работ, то масляные составы – лучший выбор, так как они не только устойчивы к ультрафиолету, но, что очень важно, легко наносятся на поверхность практически любым малярным инструментом. Основой служат специальные красители, растворимые в олифе, но при загустении морилку можно развести уайт-спиритом.

Вопрос о том, сколько сохнет морилка, важен для планирования сроков работ, поэтому нужно принимать во внимание то, что после нанесения масляного состава поверхность не сразу будет готова к дальнейшей обработке.

Масляные морилки широко используются и для внутренних, и для наружных работ, при этом на поверхности дерева образуется тонкая защитная пленка, которая положительно влияет на влагостойкость материала, а также устойчивость и к другим негативным факторам.

Акриловые и восковые морилки

Бейц на восковой основе и акриловая морилка для дерева относятся к последнему поколению изделий этого типа, которые лишены многих недостатков, присущих классическим видам. Важным преимуществом акриловых составов является формирование красивой поверхности, тонированной практически в любой цвет, и приобретение влаго- и водоотталкивающих свойств.

Могут наноситься равномерно в один или два слоя, с использованием разных инструментов. Используются в основном для декорирования предметов мебели или элементов интерьера, но высокая износостойкость позволяет их применение для отделки деревянного пола или паркетной доски.

Срок высыхания акриловых морилок небольшой, а, кроме того, они безопасны для здоровья человека и на стадии работ, и во время эксплуатации, так как не являются источником неприятных запахов и токсичных испарений.

В том случае, если интересует вопрос, можно ли наносить морилку на морилку, то в случае с использованием воскового состава ответ будет положительным.

Основное назначение таких бейцев – обработка мягким воском уже декорированных другими видами морилок поверхностей для улучшения их эксплуатационных характеристик. Учитывая то, что они представляют собой субстанцию в виде размягченного воска, то для их нанесения используются тканевые тампоны, а процесс обработки поверхности представляет собой втирание состава плавными движениями.

Часто восковая морилка используется как финишный слой после процедуры отбеливания древесины, для которой применяют специальные составы на основе перекиси водорода или кислот.

Как изготовить морилку для дерева своими руками?

Так как морилка – состав на основе растворителя и разведенного в нем пигмента, то часто имеющего естественное происхождение, то самостоятельно изготовить средство для обработки древесины вполне реальная задача.

1. Если планируется использовать натуральные компоненты, следует знать их особенности и возможности по окрашиванию определенных пород дерева.

Чтобы тонировать светлую древесину, можно использовать луковую шелуху, которая придаст ей красноватый оттенок, а насыщенный оттенок этого колера даст кора лиственницы.

Коричневый цвет придают следующие компоненты: кора дуба или ивы, скорлупа ореха, а черный – ольха или верба.

Использование скорлупы грецкого ореха может дать сразу два цвета: красный при добавлении в отвар пищевой соды и бихромата калия, а чтобы получить серый колер, нужно обработать окрашенную поверхность раствором уксусной кислоты. При изготовлении морилок из растительных компонентов важно хорошо измельчить исходный материал и получить насыщенный отвар, который и будет являться основой для окрашивающего состава.

Виды натяжных потолков. Как выбрать подходящий дизайн? — здесь больше полезной информации.

2. Но для изготовления морилок можно использовать и синтетические материалы или даже продукты питания, например, кофе или чай, которые позволяют получить различные натуральные оттенки – от желто-коричневого до почти черного.

Можно с этой целью использовать и уксус, в котором «настаивают» в течение нескольких суток металлические изделия, например, гвозди. В результате использования такого состава, поверхность древесины приобретет черный цвет, насыщенность которого будет зависеть от срока выдержки.

Вас заинтересует эта статья — Рубленый дом: технология и секрет популярности.

Но работать с такой морилкой следует осторожно и исключительно на улице, так как она имеет очень резкий удушающий запах.

Кроме того, запрещается использовать впоследствии полиуретановый лак в качестве финишного слоя, так как он просто свернется при нанесении на поверхность.

А в том случае, если нужен красный колер для окрашивания изделий из древесины, то следует заглянуть в аптечку – для этого идеально подходит перманганат калия. При этом интенсивность оттенка можно варьировать как насыщенностью раствора, так и количеством слоев.

3. Для морения древесины можно использовать и химические компоненты: гашеная известь способна придать дубу благородный коричневый цвет, а для ореха он проявится зеленоватым оттенком. Обычная перекись водорода является идеальным составом для выполнения процедуры отбеливания.

4.1: Введение в окрашивание — Биология LibreTexts

  1. Последнее обновление
  2. Сохранить как PDF
  • Идентификатор страницы
    52240
    • Джоан Петерсен и Сьюзан Маклафлин
    • Общественный колледж Квинсборо

    Цели обучения

    • Описать различия между методами простого окрашивания и дифференциального окрашивания.
    • Обсудите, как приготовить бактериальный мазок из культивируемых организмов.
    • Различают грамположительные и грамотрицательные бактерии.
    • Опишите процесс окрашивания по Граму.
    • Используйте микроскопию для исследования клеток, окрашенных по Граму.
    • Опишите некоторые специальные процедуры окрашивания и просмотрите их примеры при погружении в масло.

     

    Почему мы должны окрашивать бактерии?

    Большинство типов клеток не имеют большого количества естественного пигмента, и поэтому их трудно увидеть под световым микроскопом, если они не окрашены. Несколько типов красителей используются, чтобы сделать бактериальные клетки более заметными. Кроме того, можно использовать специальные методы окрашивания для определения биохимических или структурных свойств клеток, таких как тип клеточной стенки и наличие или отсутствие эндоспор. Этот тип информации может помочь ученым идентифицировать и классифицировать микроорганизмы и может использоваться поставщиками медицинских услуг для диагностики причины бактериальной инфекции.

     

    Простое окрашивание

    Одним из типов процедур окрашивания, которые можно использовать, является простое окрашивание , при котором используется только одно окрашивание, и все типы бактерий проявляются в цвете этого окрашивания при просмотре под микроскоп. Некоторые красители, обычно используемые для простого окрашивания, включают кристаллический фиолетовый, сафранин и метиленовый синий. Простые окраски можно использовать для определения морфологии и расположения видов бактерий, но они не дают никакой дополнительной информации. Живые бактерии почти бесцветны и не создают достаточного контраста с водой, в которой они взвешены, чтобы быть хорошо видимыми. Целью окрашивания является увеличение контраста между организмами и фоном, чтобы их было легче увидеть в световой микроскоп. При простом окрашивании бактериальный мазок окрашивается раствором одного красителя, который окрашивает все клетки в один цвет без дифференциации типов или структур клеток. В нашей лаборатории используется единственный краситель – метиленовый синий, основной краситель. Основные красители, имеющие положительный заряд, прочно связываются с отрицательно заряженными компонентами клеток, такими как бактериальные нуклеиновые кислоты и клеточные стенки.

     

    Изображение 1: Вид под микроскопом бактерий в форме бацилл (палочков), окрашенных кристаллическим фиолетовым. Изолировано и изображено Мунтасиром Аламом, Университет Дакки, факультет микробиологии, в 2007 г.

    Смотреть видео 1: Как нанести простой краситель на бактериальную культуру от NC BioNetwork (4:05) URL: https://youtu.be/8ODeT9DLHKI

     

    Окраска по Граму

    Ученые часто выбирают дифференциальную окраску , поскольку это позволяет им собрать дополнительную информацию о бактериях, с которыми они работают. Дифференциальные красители используют более одного красителя, и клетки будут иметь различный внешний вид в зависимости от их химических или структурных свойств. Некоторыми примерами дифференциального окрашивания являются окрашивание по Граму, кислотоустойчивое окрашивание и окрашивание эндоспор. Вы узнаете, как подготовить бактериальные клетки к окрашиванию, и узнаете о методе окрашивания по Граму.

    Эта широко используемая процедура окрашивания была впервые разработана датским бактериологом Гансом Христианом Грамом в 1882 г. (опубликовано в 1884 г.) при работе с образцами тканей легких пациентов, умерших от пневмонии. С тех пор процедура окрашивания по Граму повсеместно используется микробиологами для получения важной информации о видах бактерий, с которыми они работают. Знание реакции Грама клинического изолята может помочь медицинскому работнику поставить диагноз и выбрать подходящий антибиотик для лечения.

    Результаты окрашивания по Граму отражают различия в составе клеточной стенки. Грамположительные клетки имеют толстые слои пептидогликана (углевода) в клеточных стенках; грамотрицательных бактерий очень мало. Грамположительные бактерии также содержат тейхоевые кислоты, а грамотрицательные – нет. Грамотрицательные клетки имеют наружную мембрану, напоминающую фосфолипидный бислой клеточной мембраны. Наружная мембрана содержит липополисахариды (ЛПС), которые высвобождаются в виде эндотоксинов при гибели грамотрицательных клеток. Это может беспокоить человека с инфекцией, вызванной грамотрицательным микроорганизмом.

    Изображение 2: Микроскопическое изображение окраски по Граму смешанных грамположительных кокков ( Staphylococcus aureus ATCC 25923, фиолетовый) и грамотрицательных бацилл ( Escherichia coli

    75 ATCC 1, красный). Увеличение: 1000. Изображение Y Тамбе. https://commons.wikimedia.org/wiki/F…m_stain_01.jpg

     

    На рисунке 1 ниже показаны основные различия между грамположительными и грамотрицательными клеточными стенками. Различия в составе клеточной стенки отражаются в том, как клетки реагируют на красители, используемые в процедуре окрашивания по Граму.

    Окрашивание по Граму лучше всего проводить на свежих культурах — более старые клетки могут иметь поврежденные клеточные стенки и не давать правильной реакции по Граму. Некоторые виды известны как Грамм-переменная , поэтому на предметном стекле могут быть видны как грамположительные, так и грамотрицательные реакции.

    Неправильная техника окрашивания может привести к неточным результатам. Одним из наиболее важных этапов окрашивания по Граму является этап обесцвечивания (использование спирта/ацетона). Если обесцвечиватель не оставлять на достаточно долгое время, он не сможет различать грамположительные и грамотрицательные бактерии. На этом этапе используется обесцвечиватель, изготовленный из смеси спирта и ацетона. Его функция у грамотрицательных бактерий заключается в удалении внешней клеточной мембраны и тонкого слоя пептидогликана. Клеточная мембрана в основном состоит из липидов и чувствительна к спиртам. При растворении этих слоев комплекс кристаллический фиолетовый-йод также удаляется, и, таким образом, грамотрицательные бактерии теперь могут поглощать вторичный краситель, сафранин, который используется на последнем этапе окрашивания по Граму, окрашивая их в розовато-красный цвет и дифференцируя между ними и грамположительными, которые благодаря своему толстому пептидогликановому слою сохранили первичную окраску, кристаллический фиолетовый, и выглядят пурпурно-синими. С другой стороны, если вы используете слишком много обесцвечивателя, он может обесцветить образец на предметном стекле, что приведет к потере комплекса кристаллический фиолетовый (основной краситель) с йодом. Стадия обесцвечивания чувствительна из-за структуры клеточной стенки. Даже грамположительные бактерии с их толстыми клеточными стенками могут чрезмерно обесцвечиваться, что приводит к потере пептидогликанового слоя и комплекса кристаллический фиолетовый-йод. Когда на последнем этапе используется вторичный краситель, сафранин, грамположительные бактерии подхватывают это окрашивание и становятся красновато-розовыми, а не пурпурно-синими. Посмотрите видео 2 для примера этого.

    Еще одна распространенная ошибка заключается в приготовлении бактериального мазка, который является первым этапом любой процедуры окрашивания. Это включает в себя нанесение тонкой пленки бактерий на предметное стекло микроскопа, а затем термофиксацию   с помощью бунзеновской горелки, баксинизатора или нагревателя предметного стекла. Основная цель этого шага — прикрепить бактериальные клетки к предметному стеклу микроскопа (это также денатурирует белки и убивает их). Если вы забудете сделать этот шаг, клетки будут «смываться» на всех последующих этапах процесса окрашивания. У вас буквально не будет клеток на предметном стекле для окрашивания!

    Хотя подавляющее большинство бактерий либо грамположительны, либо грамотрицательны, важно помнить, что не все бактерии можно окрасить с помощью этой процедуры (например, микоплазмы, не имеющие клеточной стенки, плохо окрашиваются по Граму). .

    Рисунок 1. Стенки грамположительных и грамотрицательных клеток

     

    Смотреть видео 2: Окрашивание по Граму Анимация и обсуждение того, что происходит на каждом этапе.

    Смотреть видео 2 : Анимация окрашивания по Граму с описанием каждого шага и интерпретацией того, что происходит на каждом шаге на

    Доктор Г. Бхану Пракаш Медицинские анимированные видеоролики. (3:37) URL https://youtu.be/AZS2wb7pMo4

     

    Смотреть видео 3. Процедура окрашивания по Граму

    Смотреть видео 2. Процедура окрашивания по Граму , снято в микробиологических лабораториях штата Северная Каролина. (5:58). URL: https://youtu.be/H-fxk1be1hQ

     

    Специальные красители

    Существует множество процедур окрашивания, используемых для выявления определенных внешних или внутренних структур, которые не обнаруживаются у всех видов бактерий, например окрашивание капсулы. и пятно на жгутиках. Изображения и другие примеры специализированных пятен см. ниже и в следующем разделе 4.2 специализированных методов окрашивания бактерий.

    Краситель для капсул

    Некоторые бактерии выделяют богатую полисахаридами структуру за пределами клеточной стенки, называемую гликокаликсом. Если гликокаликс тонкий и слабо прикреплен, его называют слоем слизи ; если он толстый и плотно связан с клеткой, его называют капсулой . Гликокаликс может защищать клетку от высыхания и позволяет клетке прилипать к поверхностям, таким как ткани в организме. Они также могут обеспечивать защиту клеток от обнаружения и фагоцитоза иммунными клетками и способствовать образованию биопленки: таким образом, гликокаликс может действовать как фактор вирулентности; (способствует способности организма вызывать заболевание).

    Капсулы можно обнаружить с помощью процедуры отрицательного окрашивания , при которой фон (препарат) и бактерии окрашиваются, но капсула не окрашивается. Капсула выглядит как четкая неокрашенная зона вокруг бактериальной клетки. Поскольку капсулы разрушаются при нагревании, процедура окрашивания капсул проводится без термофиксации бактерий.

    Серебряный краситель

    Жгутики (длинные хлыстообразные структуры, используемые для подвижности бактерий) и некоторые бактерии (например, спирохеты ) слишком тонкие, чтобы их можно было наблюдать при обычных процедурах окрашивания. В этих случаях используется серебристый краситель . Нитрат серебра наносят на бактерии вместе со специальной протравой; нитрат серебра осаждается вокруг жгутиков или тонких бактерий, утолщая их, чтобы их можно было наблюдать под световым микроскопом.

     

    Эта страница под названием 4.1: Введение в окрашивание распространяется в соответствии с лицензией CC BY-NC-SA, автором, ремиксом и/или куратором этой страницы являются Джоан Петерсен и Сьюзан Маклафлин.

    1. Наверх
      • Была ли эта статья полезной?
      1. Тип изделия
        Раздел или Страница
        Автор
        Джоан Петерсен и Сьюзан Маклафлин
        Лицензия
        СС BY-NC-SA
        Показать оглавление
        нет
      2. Теги
        1. Капсульная окраска
        2. Окрашивание по Граму
        3. Окрашивание серебром
        4. источник[1]-био-15964
        5. источник[2]-био-15964

      Гистология, окрашивание — StatPearls — NCBI Bookshelf

      Введение

      Медицинская гистология — это микроскопическое исследование тканей и органов путем изготовления срезов, окрашивания и исследования этих срезов под микроскопом. Часто называемая микроскопической анатомией и гистохимией, гистология позволяет визуализировать структуру ткани и характерные изменения, которые могут произойти в ткани. Из-за этого он используется в медицинской диагностике, научных исследованиях, вскрытии и судебно-медицинской экспертизе. После того, как образец ткани подвергся фиксации, обработке, заливке, разрезанию и окрашиванию, он может быть подвергнут анализу с помощью микроскопии, а результаты интерпретированы патологоанатомом. Выбор гистологических красителей для данного образца зависит от поставленного исследовательского вопроса. Усовершенствованная интерпретация гистологического препарата в сочетании с историей болезни пациента может оказать неоценимое влияние на ход лечения и прогноз.

      Вопросы, вызывающие озабоченность

      Базовые знания о подготовке тканей, включая окрашивание, важно знать при интерпретации отчетов о патологии как при стационарной, так и при амбулаторной биопсии. Не всегда интерпретирующий патологоанатом тщательно проанализировал образец ткани, включив соответствующее гистологическое окрашивание, и этот недостаток может замедлить постановку точного диагноза.

      Структура

      Четыре основных типа тканей человека можно окрашивать и просматривать с помощью различных гистологических методов. Эпителий, соединительная ткань, мышечная ткань и нервная ткань имеют общие черты, но после окрашивания выглядят очень различно структурно. Каждое пятно существует, чтобы выделить важную особенность или компонент в пределах типа ткани. Например, один из наиболее распространенных красителей, гематоксилин, представляет собой основной краситель, который окрашивает белки в синий цвет, а эозин окрашивает белки в розовый цвет. Эти два красителя обычно используются вместе для определения внутриклеточных органелл и белков. Из-за разнообразия существующих белков были созданы некоторые красители, чтобы выделить конкретный белок, который будет обсуждаться в следующих разделах этого обзора. Преимущество использования специального красителя заключается в том, что он очень хорошо выделяет конкретный белок. Однако из-за своей специфики другие структуры не будут видны. По этой причине из данного образца часто создается несколько слайдов, чтобы можно было выполнить несколько окрашиваний для сбора всего спектра необходимой информации.

      Функция

      Почти все окрашивания тканей выполняются на тканях, которые были удалены с тела. Однако в редких случаях очень специализированные пятна, называемые жизненными пятнами, могут воздействовать на ткани, оставшиеся в организме. Эти пятна используются для идентификации определенных типов тканей и идентификации аномальной ткани, поэтому последующая биопсия может быть более точной при получении аномальной ткани.

      Подготовка тканей

      Прежде чем можно будет получить специфическое окрашивание, образцы тканей должны пройти следующие этапы подготовки: фиксация, обработка, встраивание, создание срезов и иногда поиск антигена. В современных гистологических лабораториях большинство этих этапов автоматизированы.

      Фиксация: Фиксация использует химические вещества для сохранения структуры ткани в ее естественной форме и защищает ее от деградации за счет необратимо сшивающих белков. Хотя доступно несколько специализированных фиксаторов, нейтральный забуференный формалин является обычным выбором для этого этапа. Этап фиксации жизненно важен для остальной части процедуры гистологического окрашивания, потому что, сохраняя химический состав ткани, образец затвердевает и облегчает фазу срезов. Еще одним эффективным фиксатором является парафиноформалин. Его преимущество в том, что он является предпочтительным фиксатором для иммуноокрашивания; однако это требует подготовки во время фиксации. Буэн — это фиксатор, используемый для исследования эмбрионов и мозговой ткани из-за превосходной сохранности нежных ядер и гликогена. Его недостатком является то, что он плохо сохраняет ткани почек, а также искажает структуру митохондрий.[1]

      Дегидратация: Добавление этанола завершает дегидратацию образца. Он удалил воду из образца и дополнительно затвердел ткань для возможной световой микроскопии. После применения этанола и после завершения обезвоживания ткани для удаления этанола используется ксилол.

      Заливка:  Заливка — это процесс помещения образца в парафиновый воск или пластиковую смолу для улучшения процесса извлечения клеточных структур. Этот шаг следует выполнять с осторожностью, если целью является иммуноокрашивание, поскольку парафиновый воск будет препятствовать проникновению антител и приведет к ложному результату.[1]

      Секционирование: Срезирование включает установку образца на микротом и его разрезание на срезы. Предпочтительная толщина составляет 4-5 микрометров, чтобы ее можно было окрасить и нанести на предметное стекло для исследования.[1]

      Извлечение антигена:  Этот этап предназначен для извлечения антигенов, которые могли быть охвачены на этапах фиксации и встраивания. Если перекрестное связывание белков скрывает участки антигена, иммуногистохимический ответ может быть не таким сильным. Извлечение антигена достигается с помощью нагревания и протеолитических методов для разрушения поперечных связей и выявления эпитопов и антигенов, которые ранее были покрыты. Хотя на этом этапе существует риск денатурации как фиксатора, так и самих антигенов, успешный метод извлечения антигена может привести к гораздо более эффективной интенсивности иммунного окрашивания.

      Гистохимия и цитохимия

      Гематоксилин и эозин

      Как следует из названия, это два окрашивания, выполненные на последовательных этапах. Гематоксилин представляет собой основной краситель, окрашивающий кислые структуры. Полученный цвет имеет пурпурно-синий оттенок, а структуры, на которые нацелен этот краситель, называются базофильными. Базофильные структуры включают ДНК в ядрах клеток, РНК в рибосомах и шероховатый эндоплазматический ретикулум.[1]

      Эозин – это контрастное окрашивание после гематоксилина, кислотный краситель, воздействующий на основные структуры. Полученный цвет имеет розово-красный оттенок, а структуры, привлекающие эозин, называются эозинофильными.[1] Цитоплазма является примером эозинофильной структуры.

      Окрашивание по Граму

      Окрашивание по Граму — это метод последовательного окрашивания, разработанный для дифференциации видов бактерий. Его основная полезность заключается в определении возбудителя бактериальной инфекции путем окрашивания клеточной стенки.[2] Хотя не все бактерии имеют клеточную стенку и, следовательно, не могут быть окрашены этим методом, это все же очень полезное и часто выполняемое окрашивание. Бактериальный образец можно зафиксировать нагреванием и подвергнуть окрашиванию по Граму, выполнив следующие четыре этапа: первичное окрашивание кристаллическим фиолетовым, вторичное окрашивание грамм-йодом, обесцвечивание спиртом или ацетоном и контрастное окрашивание сафранином. Грамположительные бактерии содержат толстый слой пептидогликана, из-за чего они сохраняют фиолетовую окраску и кажутся фиолетовыми. С другой стороны, грамотрицательные бактерии имеют тонкий слой пептидогликана и больше липидов в клеточной стенке, поэтому этап обесцвечивания сильнее вымывает фиолетовый цвет, и образец выглядит розовым.[2]

      Краситель Гимзы

      Окрашивание по Гимзе широко используется в гематологии благодаря его превосходной способности окрашивать костный мозг, плазматические клетки и тучные клетки. Он также очень популярен для выявления паразитов крови.[3] Окрашивание по Гимзе также может помочь визуализировать хромосомные аномалии с помощью «полосатости по Гимзе» или наблюдения за чередованием более темных и светлых участков нуклеотидов на хромосомах во время митоза.

      Периодическая кислотная реакция Шиффа

      Окрашивание реакцией Шиффа с периодической кислотой, часто называемое окрашиванием PAS, представляет собой способ исследования структур, содержащих большое количество молекул углеводов, таких как щеточная кайма кишечника, клетки почечных канальцев, слизь и ретикулярные волокна соединительной ткани. [4] Гликоген, гликопротеин, гликолипиды и муцины окрашиваются в красный или пурпурный цвет, когда окрашивание завершено. Периодическая кислота, сильно окисленный йод, окисляет гидроксильные группы соседних молекул сахара с образованием альдегидов. После этого шага реагент Шиффа присоединяется к альдегиду и образует красно-пурпурный цвет для визуализации.

      Трихром Массона

      Masson’s Trichrome Stain — это краситель, который может дать многоцветный результат на ткани.

      Несмотря на то, что он имеет красные контрастные пятна, он популярен благодаря своей способности окрашивать волокна коллагена в синий цвет. Трихром Массона может идентифицировать сердечный фиброз, легочный фиброз, хроническое заболевание почек и мышечную дистрофию.[7]

      Красный Конго

      Красный конго представляет собой водорастворимый синий краситель, образующий красный раствор при рН 3,0–5,0. Его многочисленные ароматические кольца могут складываться вместе посредством гидрофобных взаимодействий и накапливаться в тканях. В частности, конго красный может окрашивать амилоидные волокна в красный и оранжевый цвет, что делает его полезным для изучения при амилоидозе. При просмотре в поляризованном свете под микроскопом ткани с высоким содержанием амилоида, окрашенные конго-красным, будут иметь яркое двойное лучепреломление «яблочно-зеленого цвета». PMID: [8]

      Берлинская лазурь

      Окрашивание берлинской лазурью полезно для определения запасов железа в организме. [7][9] Краситель работает, сначала окрашивая ткань соляной кислотой, а затем наблюдая, как ионы трехвалентного железа реагируют с образованием нерастворимого ярко-синего пигмента. Это полезно для диагностики состояний накопления железа, таких как гемохроматоз или гемосидероз, путем окрашивания ткани печени и наблюдения за накоплением железа вблизи перипортальных гепатоцитов или вдоль синусоидальной выстилки. Переизбыток запасов железа в костном мозге может сигнализировать о неэффективном эритропоэзе, например, при анемии хронического заболевания. С другой стороны, отсутствие реакции на окрашивание берлинской лазурью может указывать на низкий уровень железа, как при железодефицитной анемии.

      Муцикармин

      Муцикармин окрашивает муцин, секрет, вырабатываемый клетками эпителия и соединительной ткани.[12] Алюминий и кармин объединяются, образуя положительно заряженный хелатирующий комплекс. Новый положительный заряд связывает муцин, окрашивает его в красный цвет и позволяет визуализировать. Это полезно для выявления потенциальных карцином и воспалительных состояний, при которых наблюдается избыточная продукция муцина.[12] В хирургии окрашивание муцикармином также может определить первичную локализацию опухоли путем окрашивания секретирующего слизь эпителия в участке, не содержащем клеток, продуцирующих муцин.[13] Муцикармин также окрашивает студенистую капсулу грибов Криптококк .[12]

      Черный Судан

      Краситель Судан Черный окрашивает липидсодержащие структуры, такие как триглицериды и липопротеины, в темно-черный или коричневый цвет. быть окрашенным. Его можно использовать для диагностики атеросклероза путем окрашивания атеросклеротических бляшек и аутосомно-доминантной лейкодистрофии путем окрашивания макрофагов в белом веществе после посмертной биопсии головного мозга.

      Масляно-красный O

      Подобно красителю суданскому черному, Oil Red O является наиболее распространенным красителем, используемым для гидрофобных жиров или липидов, веществ, которые традиционно трудно окрашивать. Oil Red O очень полезен для визуализации атеросклеротических бляшек и накопления липидов в печени и мышцах.[7][6][14]

      Серебряное пятно

      Окрашивание серебром представляет собой большую категорию окрашиваний, используемых для гистопатологического исследования заболеваний, связанных с аккумуляцией, в неврологии. Существует несколько методов окрашивания серебром, в том числе по Бильшовскому, Галлиасу, Бодиану и Кэмпбеллу-Свитцеру. Выбранный метод окрашивания зависит от рассматриваемого неврологического поражения, поскольку каждый метод говорит о различной чувствительности и специфичности. Как правило, эти методы связывают ионы серебра или комплексы солей с тканью-мишенью. Затем они должны быть восстановлены на месте, а последующие частицы серебра накапливаются и могут быть проанализированы.[15] Недавно было использовано фторирование, когда флуорогенный полупроводник высвобождает небольшие наночастицы размером 6 нм в отложениях серебра и создает цвета. Диапазон диаметров образующихся частиц серебра соответствует разным цветам. Например, диапазоны от 10 до 20 нм дают желтый цвет, тогда как диаметры, превышающие 100 нм, дают черный цвет.[16]

      Окрашивание серебром хорошо известно для обнаружения бета-амилоидного белка (Aß) при болезни Альцгеймера и телец Пика при болезни Пикса. При окрашивании амилоидные бляшки становятся темнее. Они могут варьироваться от желтого до черного, в зависимости от размера или количества амилоидных бляшек.[15]

      Краситель Ниссля

      Окрашивание по Нисслю, также известное как окраска крезил-виолет, использует основной анилиновый краситель для изучения структуры нейронов в головном и спинном мозге. Нейропил окрашивается в голубовато-фиолетовые и зернистые пятна. Вещество Ниссля имеет большое количество рибосомной РНК, поэтому оно притягивает краситель, выглядит темно-синим и делает цитоплазму пятнистой. Преимущество использования окраски Ниссля для оценки патологии нейронов заключается в том, что она будет распознаваемо окрашивать цитоплазму нейронов, не окрашивая перикарионы других клеточных структур, таких как астроциты. [17]

      Пятно по Папаниколау

      Окрашивание по Папаниколау, в просторечии называемое мазком Папаниколау, представляет собой метод цитологического окрашивания, наиболее известный для выявления рака шейки матки у пациенток. Клетки для окрашивания собирают из гинекологических мазков, образцов мокроты, соскобов, материалов для тонкоигольной аспирации и смывов. Мультихроматическое окрашивание включает пять красителей: гематоксилин для ядра, оранжевый G для кератина, эозин для поверхностных структур, светло-зеленый SF для цитоплазмы и бисмарк-коричневый [18]. В условиях скрининга рака шейки матки берут мазок Папаниколау, полученную окраску клеток эпителия переходной зоны шейки матки подвергают анализу на предраковые и раковые процессы. Часто готовят второй слайд для иммуноокрашивания биомаркером p16INK4a для выявления дисплазии [19].]

      Микроскопия световая

      Световой микроскоп, также называемый оптическим микроскопом, можно использовать для просмотра живых или мертвых образцов. Увеличение ниже, чем у электронных микроскопов в 1500 раз. Метод освещения — это освещение микроскопа, а не пучок электронов.[20] Световой микроскоп используется для большинства пятен, описанных в этой статье, таких как окрашивание по Граму, окрашивание H & E и окрашивание по Гимзе.

      Электронная микроскопия

      Электронный микроскоп полезен для просмотра внутриклеточных компонентов, невидимых при световой микроскопии, что помогает уточнить биологию аномальных тканей и клеток. Электронная микроскопия обычно увеличивает в 100–300 раз больше, чем самое большое увеличение световой микроскопии.[20] Как правило, срезы должны быть ультратонкими, чтобы обеспечить адекватное проникновение электронов. Наиболее полезными для электронной микроскопии являются гистологические красители с солями тяжелых металлов, поскольку они создают фазовый контраст, необходимый для визуализации структур.[21] Трансмиссионные электронные микроскопы лучше подходят для исследования внутриклеточных структур, в то время как сканирующие электронные микроскопы обычно лучше подходят для исследования поверхностных структур.

      Патофизиология

      Использование специальных красителей для тканей не только помогает различить структурные изменения тканей, но также предупреждает врача об изменениях функции тканей, имеющих большое значение для постановки диагноза, таких как аномальное отложение железа или аномальное отложение белка [амилоидоз , парапротеинемия и т. д., аномальное накопление гликогена или других углеводов и аномальное накопление жира. Высокоспециализированное окрашивание может обнаружить многие другие изменения в клеточной физиологии.

      Клиническое значение

      Гистологическое окрашивание и исследование имеют очень большое клиническое значение в медицинской диагностике и лечении практически во всех областях медицины. Гистологическое исследование является золотым стандартом диагностики многих патологических заболеваний, для которых окраска является обязательным компонентом. Гистохимический анализ образца ткани позволяет патологоанатому не только поставить диагноз, но и определить тяжесть заболевания и дать прогноз.

      Обзорные вопросы

      • Получите доступ к бесплатным вопросам с несколькими вариантами ответов по этой теме.

      • Комментарий к этой статье.

      Ссылки

      1.

      Алтуркистани Х.А., Ташканди Ф.М., Мохаммедсалех З.М. Гистологические пятна: обзор литературы и тематическое исследование. Глоб Дж. Науки о здоровье. 2015 25 июня; 8 (3): 72-9. [Бесплатная статья PMC: PMC4804027] [PubMed: 26493433]

      2.

      Brown RC, Hopps HC. Окрашивание бактерий в срезах тканей: надежный метод окрашивания по Граму. Ам Джей Клин Патол. 1973 августа; 60(2):234-40. [PubMed: 4124318]

      3.

      Долан М. Роль окраски Гимзы в цитогенетике. Биотехнологический гистохим. 2011 апрель; 86 (2): 94-7. [PubMed: 21395494]

      4.

      Аль Дрис А., Салах Халил М., Солиман М. Гистологическая и иммуногистохимическая основа влияния аминогуанидина на почечные изменения, связанные с геморрагическим шоком на крысиной модели. Acta Histochem Cytochem. 2017 февраль 28;50(1):11-19. [Бесплатная статья PMC: PMC5374099] [PubMed: 28386146]

      5.

      Грин Дж., Луи Дж., Коростинска О., Мейсон А. Современные методы анализа гликогена скелетных мышц у спортсменов – необходимость новых неинвазивных методов. Биосенсоры (Базель). 23 февраля 2017 г. 7(1) [бесплатная статья PMC: PMC5371784] [PubMed: 28241495]

      6.

      Prats C, Gomez-Cabello A, Nordby P, Andersen JL, Helge JW, Dela F, Baba O , Ploug T. Оптимизированный гистохимический метод оценки запасов гликогена и липидов в скелетных мышцах выявил две метаболически различные популяции мышечных волокон I типа. ПЛОС Один. 2013;8(10):e77774. [Бесплатная статья PMC: PMC3813758] [PubMed: 24204959]

      7.

      Вютей Т., Эррера Г., Додеро В.И. Красители и красители: от молекулярной структуры до гистологического применения. Front Biosci (Landmark Ed). 2014 01 января; 19 (1): 91-112. [PubMed: 24389174]

      8.

      Якупова Е.И., Бобылева Л.Г., Вихлянцев И.М., Бобылев А.Г. Конго красный и амилоиды: история и взаимосвязь. Отчет Biosci, 31 января 2019 г., 39(1) [бесплатная статья PMC: PMC6331669] [PubMed: 30567726]

      9.

      McGavin MD. Факторы, влияющие на видимость ткани-мишени на гистологических срезах. Вет Патол. 2014 янв;51(1):9-27. [PubMed: 24395975]

      10.

      Пармли Р.Т., Гилберт С.С., Уайт Д.А., Бартон Д.К. Ультраструктурное усиление серебром реактивного железа с берлинской лазурью в гемопоэтических и кишечных клетках. J Гистохим Цитохим. 1988 г., апрель; 36 (4): 433–40. [PubMed: 2450121]

      11.

      Кларк П., Бриттон Л.Дж., Пауэлл Л.В. Диагностика и лечение наследственного гемохроматоза. Clin Biochem Rev. 2010 Feb;31(1):3-8. [Бесплатная статья PMC: PMC2826266] [PubMed: 20179792]

      12.

      Дапсон РВ. История, химия и способы действия кармина и родственных красителей. Биотехнологический гистохим. 2007 г., август; 82 (4–5): 173–87. [PubMed: 18074265]

      13.

      Куфе Д.В. Муцины при раке: функция, прогноз и терапия. Нат Рев Рак. 2009 г., декабрь 9(12):874-85. [Статья бесплатно PMC: PMC2951677] [PubMed: 19935676]

      14.

      Mehlem A, Hagberg CE, Muhl L, Eriksson U, Falkevall A. Визуализация нейтральных липидов с помощью масляного красного O для анализа метаболического статуса в организме и болезни. Нат Проток. 2013 Июн;8(6):1149-54. [PubMed: 23702831]

      15.

      Учихара Т. Серебряный диагноз в невропатологии: принципы, практика и пересмотренная интерпретация. Акта Нейропатол. 2007 май; 113(5):483-99. [Бесплатная статья PMC: PMC1868652] [PubMed: 17401570]

      16.

      Бруше М., Моронн М., Джин П., Вайс С., Аливисатос А.П. Полупроводниковые нанокристаллы как флуоресцентные биологические метки. Наука. 1998 г., 25 сентября; 281(5385):2013-6. [PubMed: 9748157]

      17.

      Кадар А.

      Добавить комментарий

      Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *